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Warum ist mein NAD+ gelb geworden? Farbe, Stabilität und Lagerung

Warum ist mein NAD+ gelb geworden? Farbe, Stabilität und Lagerung

Eine blassgelbe NAD+-Lösung liegt an der Grenze dessen, was die Datenblätter der Reagenzienhersteller beschreiben, oder schon darüber: Die meisten nennen frisch gelöstes NAD+ klar und farblos, eine Spezifikation lässt farblos bis schwach gelblich zu. Was die Farbe nicht verrät, ist die Ursache des Gelbstichs und wie viel NAD+ noch vorhanden ist. NAD+ ist kein Peptid, sondern ein Coenzym aus der Gruppe der Dinukleotide, und es ist als Arzneimittel nur in China zugelassen, dort als Injektion. Diese Seite erklärt die belegte Chemie und zeigt deutlich, wo ihre Aussagekraft endet.

Ist NAD+ normalerweise gelb? Welche Farbe NAD+ ursprünglich hat

Ist NAD+ gleich nach dem Auflösen gelb? Nach den Angaben der Hersteller von Laborreagenzien meist nicht. Ob der Stoff NAD, NAD+ oder NAD plus heißt, eine frische Lösung beschreiben sie als farblos; eine Spezifikation lässt höchstens einen schwach gelblichen Ton zu. NAD+ (Nicotinamidadenindinukleotid, 663,43 g/mol) besteht aus zwei Nukleotiden, die eine Phosphatbrücke verbindet. Aminosäuren enthält es nicht. Die Frage, ob das „NAD-Peptid“ gelb ist, beruht deshalb auf einer falschen Bezeichnung: Das Molekül wird zwar neben Peptiden verkauft, seine Farbe folgt aber der Chemie der Nukleotide.

Welche Farbe hat NAD+-Pulver?

Ein Datenblatt beschreibt die trockene Substanz als weißen bis cremeweißen, lyophilisierten (gefriergetrockneten) Feststoff, ein zweites als cremeweiß und ein drittes als kristallinen Feststoff. Ein Spezifikationsblatt lässt für das Pulver die Spanne „white to yellow“ (weiß bis gelb) zu. Ein leicht cremefarbenes oder gelbliches Pulver kann also durchaus noch innerhalb der Herstellerspezifikation liegen. Das Pulver ist hygroskopisch, zieht also Wasser aus der Luft an, und die Datenblätter sehen eine trockene Lagerung vor.

Welche Farbe hat NAD+ in Lösung?

In Wasser gelöst ergibt NAD+ laut Datenblatt „a clear, colorless solution“ (eine klare, farblose Lösung). Ein zweites Spezifikationsblatt hält dasselbe für eine 1-prozentige Lösung fest. Ein drittes, für das Natriumsalz von NAD+ bei 50 mg/ml, lässt eine Lösung zu, die „clear, colorless to faintly yellow“ ist (klar, farblos bis schwach gelblich). NAD+ nimmt ultraviolettes Licht bei 260 nm auf, das für das Auge unsichtbar ist, bei 340 nm dagegen nicht.

Anders verhält sich die reduzierte Form NADH. Sie entsteht, wenn NAD+ ein Hydridion aufnimmt, ein Schritt, den Enzyme namens Dehydrogenasen ausführen. Ihr veränderter Ring (ein Dihydropyridinring) nimmt Licht bei 340 nm und bei 260 nm auf, und ein NADH-Datenblatt verzeichnet zusätzlich eine schwächere Aufnahme bei 365 nm. Folgerichtig beschreibt ein Hersteller NADH-Pulver als „white to slightly yellowish“ (weiß bis leicht gelblich) und die Lösung als „clear, colourless to slightly yellowish“ (klar, farblos bis leicht gelblich). NAD+ und NADH sind also keine austauschbaren Namen, sondern zwei verschiedene Stoffe mit unterschiedlicher Farbbeschreibung.

Warum ist mein NAD+ gelb geworden? Die Chemie in Wasser

Als trockener Feststoff ist NAD+ stabil, in Wasser dagegen deutlich weniger. Die Fachliteratur beschreibt mehrere Wege, auf denen es sich dort verändert, und jeder davon hängt von pH-Wert, Temperatur, Licht und Zeit ab.

Hydrolyse. In Wasser bricht die Bindung, die den Nicotinamidring von NAD+ mit seinem Zucker verknüpft. Dabei werden Nicotinamid und ADP-Ribose frei. Eine kinetische Studie beschreibt für NAD+ eine „pH-independent and base-catalyzed hydrolysis“ (eine pH-unabhängige und eine basenkatalysierte Hydrolyse), wobei bei pH 6 und darunter der pH-unabhängige Weg überwiegt. Untersuchungen zum Zerfall durch Hitze bestätigten Nicotinamid und ADP-Ribose als wichtigste Produkte.

Alkalisches Milieu. Je alkalischer eine Lösung wird, desto schneller wird NAD+ zerstört. Ein Datenblatt nennt NAD+-Lösungen in alkalischer Umgebung sehr instabil, besonders in Gegenwart von Phosphat, Maleat oder Carbonat, ein anderes hält fest, dass sich das Produkt bei alkalischem pH-Wert zersetzt. NADH verhält sich umgekehrt und zerfällt in saurer Lösung schneller. In starker Lauge wandelt sich NAD+ in ein stark fluoreszierendes Produkt um, mit dem Labore den Stoff messen. Welche Farbe dieses Produkt hat, ist in den für diese Seite ausgewerteten Quellen nicht angegeben.

Wärme und Licht. Laut demselben Datenblatt zerfallen die Lösungen beim Erhitzen rasch und sind außerdem lichtempfindlich.

Chemie reduzierender Zucker. ADP-Ribose, eines der Hydrolyseprodukte, enthält einen reduzierenden Zucker, also eine Zuckerart, die mit Aminogruppen reagieren kann. Mit Eiweißen bildet sie frühe Glykierungsprodukte und später fluoreszierende Verbindungen. Diese Art der Glykierung ist die Anfangsstufe der Maillard-Reaktion, aus der schließlich sogenannte fortgeschrittene Glykierungsendprodukte (AGEs) hervorgehen. In diesen Studien dienten Eiweiße oder Amine als Reaktionspartner. Ob diese Chemie auch in einer reinen NAD+-Lösung einen Gelbstich erzeugt, ist in den für diese Seite ausgewerteten Quellen nicht auffindbar.

Zwei kleine Glasvials, eines mit farbloser, eines mit blassgelber Flüssigkeit, dazwischen stilisierte Molekülringe, die in zwei Teile zerfallen

Für eine Lösung, in der NAD+ einen Gelbstich zeigt, fällt die ehrliche Bilanz deshalb begrenzt aus. Belegt sind die Hydrolyse, der Zerfall im alkalischen Milieu und die Empfindlichkeit gegenüber Wärme und Licht. NADH, das Datenblätter als leicht gelblich beschreiben, entsteht aus NAD+, wenn ein Enzym ein Hydrid überträgt. Ob sich in einer gelagerten NAD+-Lösung NADH bildet, lässt sich aus den für diese Seite ausgewerteten Quellen nicht klären. Welcher dieser Wege einen bestimmten Gelbstich verursacht, falls überhaupt einer, ist in den für diese Seite ausgewerteten Quellen nicht auffindbar. Das deckt sich mit der allgemeinen Regel zu Verfärbungen auf der Seite Peptide lagern: Eine Gelbfärbung geht oft mit Oxidation oder Maillard-Chemie einher, verrät aber weder, welche Reaktion abgelaufen ist, noch wie weit.

NAD+ im Vial gelb, in der Spritze blasser: die Rolle der Schichtdicke

Dieselbe Flüssigkeit kann je nach Behälter unterschiedlich aussehen. Nach dem Lambert-Beer-Gesetz in der Definition der IUPAC ist die Lichtabsorption proportional zur Konzentration des absorbierenden Stoffes und zur Strecke, die das Licht durch die Lösung zurücklegt. Eine konzentriertere Lösung wirkt deshalb dunkler, ebenso eine dickere Schicht derselben Lösung. Der schmale Zylinder einer Spritze bietet eine kurze Strecke, ein Vial, durch seine ganze Breite betrachtet, eine längere, und der Blick von oben durch ein gefülltes Vial eine noch längere.

Eine Insulinspritze mit orangefarbener Kappe auf liniertem Papier, teilweise mit einer blassgelben Flüssigkeit gefüllt

Redaktionelles Foto einer blassgelben NAD+-Lösung in einer Insulinspritze. Die Farbe allein sagt nichts darüber aus, wie viel NAD+ die Flüssigkeit enthält oder wie rein sie ist.

Die Konzentration selbst ist einfache Rechnung: die Masse des Stoffes geteilt durch das Volumen der Flüssigkeit. Der NAD+-Rekonstitutionsrechner rechnet dieses Verhältnis durch, und die Grundlagen der Rekonstitution erklären die Einheiten. Wenig Wasser auf dieselbe Masse ergibt eine konzentriertere Lösung, die nach dem Lambert-Beer-Gesetz im selben Behälter mehr Licht aufnimmt.

Wie schnell NAD+ in Lösung zerfällt

Die veröffentlichten Zahlen stammen aus Laborpuffern bei kontrollierter Temperatur, nicht aus Vials, die zu Hause aufbewahrt werden, und lassen sich nicht direkt übertragen. Mit dieser Einschränkung zeigen sie, wie stark pH-Wert, Temperatur und Puffer das Tempo bestimmen.

BedingungMolekülBerichtetes ErgebnisQuelle
Tris-Puffer, pH 8,5, 19 °C, 43 TageNAD+ (2 mM)Signal bei 260 nm um 4 Prozent gesunkenWolfe et al. 2024
HEPES-Puffer, pH 8,5, 19 °C, 43 TageNAD+ (2 mM)Fast vollständig abgebautWolfe et al. 2024
Natriumphosphatpuffer, pH 8,5, 19 °C, 43 TageNAD+ (2 mM)Abbau ähnlich schnell wie bei NADH im selben PufferWolfe et al. 2024
Tris-Puffer, pH 8,5, 19 °C vs. 25 °CNADH (2 mM)Verlust 4 vs. 11 µM pro Tag; nach 43 Tagen mehr als 90 vs. 75 Prozent übrigWolfe et al. 2024
HEPES-Puffer, pH 8,5, 19 °C vs. 25 °CNADH (2 mM)Verlust 18 vs. 51 µM pro TagWolfe et al. 2024
Natriumphosphatpuffer, pH 8,5, 19 °C vs. 25 °CNADH (2 mM)Verlust 23 vs. 34 µM pro TagWolfe et al. 2024
Wässrige Lösung, 10 mg/ml, 2 bis 8 °C, 4 WochenNAD+Mindestens 99 Prozent vorhandenDatenblatt Roche
Stammlösung, pH 2 bis 7, 4 °CNAD+Bis zu 1 Monat stabilDatenblatt Calbiochem
Neutrale oder leicht saure Lösung, 0 °CNAD+Mindestens 2 Wochen stabilDatenblatt Sigma-Aldrich
Lösung pH 2 bis 6, in Einzelportionen, -70 °CNAD+Mindestens 6 Monate stabilDatenblatt Sigma-Aldrich
50 mM Tris, pH 6,5 (gemessen bei 85 °C), 85 °CNAD+ (2 mM)Halbwertszeit 24,2 Minuten; nach 60 Minuten weniger als 25 Prozent übrigHachisuka et al. 2017
0,1 M Tris, pH 7,60 (gemessen bei 25 °C), 100 °CNAD+Halbwertszeit etwa 10 MinutenHachisuka et al. 2017, unter Berufung auf frühere Arbeiten

µM steht für Mikromol pro Liter; die Halbwertszeit ist die Zeit, nach der die Hälfte der Ausgangsmenge verschwunden ist. Die Autoren der Studie über 43 Tage bezeichnen ihre NAD+-Ergebnisse als qualitativ, weil auch Abbauprodukte von NADH bei 260 nm Licht aufnehmen, also bei der Wellenlänge, mit der NAD+ verfolgt wurde. Außerdem beobachteten sie, dass sich die 260-nm-Bande beim Zerfall von NAD+ deutlich zu längeren Wellenlängen verschob, eine sogenannte Rotverschiebung.

NAD+ leicht gelblich: was der Gelbstich verrät und was nicht

Wer NAD+ im Vial leicht gelblich vorfindet, erfährt daraus, dass die Lösung jetzt einen Teil des sichtbaren Lichts aufnimmt, den eine frische NAD+-Lösung durchgelassen hat. Wie viel NAD+ noch übrig ist, erfährt man daraus nicht. In der Studie über 43 Tage zerfiel eine NAD+-Lösung in HEPES-Puffer fast vollständig. Gemessen wurde dieser Verlust über die Absorption von ultraviolettem Licht bei 260 nm, das das Auge nicht sieht, und die sichtbare Farbe der Lösungen beschreibt die Studie nicht. Farbe und verbliebener Gehalt sind deshalb getrennte Beobachtungen, und ein schwacher Gelbstich belegt für sich genommen weder einen kleinen noch einen großen Verlust.

Die Farbe ist kein Maß für Gehalt oder Reinheit. Beides messen Labormethoden, etwa die HPLC (Hochleistungsflüssigkeitschromatographie, die jeden Bestandteil trennt und mengenmäßig erfasst) oder die enzymatischen Tests, die in den Datenblättern genannt sind. Ein Analysenzertifikat der Charge hält diese Ergebnisse für das Material im Lieferzustand fest, nicht für eine Lösung, die angesetzt und gelagert wurde. Sieht NAD+ in einem Behälter gelb und im anderen blasser aus, erklären Konzentration und Schichtdicke einen großen Teil des Unterschieds, aber keine der beiden Größen verrät, woraus der Gelbstich besteht.

Lagerbedingungen in Datenblättern und Studien

Die veröffentlichten Bedingungen weisen in dieselbe Richtung, auch wenn sie von Laborreagenzien stammen und nicht von einem Produkt zur Anwendung am Menschen.

  • Trockenes Pulver: In mehreren Datenblättern bei -20 °C gelagert, in einem weiteren bei 2 bis 8 °C, jeweils trocken, weil der Feststoff hygroskopisch ist. Ein Hersteller gibt für den Feststoff bei -20 °C eine Stabilität von mindestens 4 Jahren an.
  • pH-Wert: Neutrale bis leicht saure Lösungen gelten als stabiler, alkalische als instabil.
  • Temperatur: In der Studie über 43 Tage stieg der NADH-Verlust beim Wechsel von 19 °C auf 25 °C in Tris-Puffer von 4 auf 11 µM pro Tag und in HEPES-Puffer von 18 auf 51 µM pro Tag. Erhitzen führt nach den Datenblättern zu raschem Zerfall.
  • Licht: NAD+-Lösungen gelten als lichtempfindlich, und NADH-Datenblätter schreiben Lichtschutz vor.
  • Zeit: Ein Hersteller rät davon ab, eine wässrige NAD+-Lösung länger als einen Tag aufzubewahren, andere berichten für bestimmte Lösungen mindestens 2 Wochen bei 0 °C oder mindestens 4 Wochen bei 2 bis 8 °C.
  • Einfrieren: Eine fertige 50-mM-NAD+-Lösung wird bei -20 °C gelagert, wiederholtes Einfrieren und Auftauen wird vermieden, und für eine Lagerung über 30 Tage hinaus sind -80 °C vorgesehen.

Das sind die für Laborreagenzien festgehaltenen Bedingungen. Sie stehen hier als veröffentlichte Befunde, nicht als Handlungsanleitung. Mehr Hintergrund bieten die Seiten Peptide lagern, Peptide bei Raumtemperatur und bakteriostatisches Wasser.

Was die Arzneibücher über sichtbare Veränderungen sagen

Farbe von NAD+-Injektionslösungen und der Maßstab der Arzneibücher

Arzneibücher legen verbindliche Qualitätsstandards für Arzneimittel fest. Hier sind sie von Belang, weil sie beschreiben, wie eine Injektionslösung aussieht, die den Standard erfüllt. Das Europäische Arzneibuch hält fest: „Solutions for injection, examined under suitable conditions of visibility, are clear and practically free from particles.“ (Injektionslösungen sind, unter geeigneten Sichtbedingungen geprüft, klar und praktisch frei von Partikeln.) Die United States Pharmacopeia verlangt ein Prüfverfahren, das sicherstellt, dass jede Charge von Parenteralia, also Arzneimitteln, die per Injektion oder Infusion gegeben werden, „is essentially free from visible particulates“ (im Wesentlichen frei von sichtbaren Partikeln ist). Das Japanische Arzneibuch formuliert es vergleichbar.

Die Farbe wird über eine eigene Prüfmethode erfasst. Nach Methode 2.2.2 des Europäischen Arzneibuchs, die das Internationale Arzneibuch übernimmt, wird eine Flüssigkeit mit Vergleichslösungen im braunen, bräunlich gelben, gelben, grünlich gelben und roten Bereich verglichen. Sie gilt als farblos, wenn sie wie Wasser aussieht oder nicht stärker gefärbt ist als die verdünnteste braune Vergleichslösung B9. Die Methode legt die Anordnung genau fest: 2,0 ml in einem 12-mm-Röhrchen, von der Seite vor weißem Hintergrund betrachtet, oder eine 40 mm tiefe Schicht, von oben betrachtet. Nach dem oben beschriebenen Lambert-Beer-Gesetz beeinflusst die Schichtdicke, wie kräftig eine Farbe wirkt. Welche Färbung zulässig ist, regelt die Monographie des jeweiligen Produkts.

Eine Arzneibuchmonographie für eine NAD+-Injektionslösung ist in den für diese Seite ausgewerteten Quellen nicht auffindbar. Das passt zur Zulassungslage: Ein spritzbares NAD+-Präparat ist nur in China zugelassen, in Europa und den USA dagegen keines. Die genannten europäischen und amerikanischen Standards beschreiben also zugelassene Arzneimittel und nicht NAD+, das außerhalb dieses Systems verkauft wird.

Häufige Fragen

Ist NAD+ normalerweise gelb?

In der Regel nicht. Reagenzien-Datenblätter beschreiben NAD+-Pulver als weiß bis cremeweiß oder als cremeweiß, wobei eine Spezifikation die Spanne weiß bis gelb zulässt. Eine frisch in Wasser angesetzte Lösung gilt als klar und farblos; eine Spezifikation lässt farblos bis schwach gelblich zu. Ein Gelbstich, der über diesen schwachen Ton hinausgeht, weicht also von diesen Beschreibungen ab, doch die Farbe allein verrät nicht, woher er kommt.

Ist NAD+ klar oder gelb?

Frisch gelöstes NAD+ wird in Datenblättern als klare, farblose Lösung beschrieben; eine Spezifikation lässt farblos bis schwach gelblich zu. Die reduzierte Form NADH ist ein anderer Stoff: Ein Datenblatt beschreibt ihre Lösung als farblos bis leicht gelblich. NADH nimmt außerdem Licht bei 340 nm auf, NAD+ dagegen nicht.

Ist das NAD+-Peptid gelb?

NAD+ ist kein Peptid. Es ist ein Dinukleotid, also ein Coenzym aus zwei Nukleotiden, die eine Phosphatbrücke verbindet. Es wiegt 663,43 g/mol und enthält keine Aminosäuren. Die Bezeichnung als Peptid kommt daher, dass es neben Peptiden verkauft wird. Wie sich seine Farbe verhält, bestimmt die Chemie der Nukleotide, nicht die der Peptide.

Mein NAD+ ist gelb: Was bedeutet ein leichter Gelbstich?

Er bedeutet, dass die Lösung jetzt einen Teil des sichtbaren Lichts aufnimmt, den eine frische NAD+-Lösung durchlässt. Belegt sind folgende Veränderungen von NAD+ in Wasser: Es zerfällt durch Hydrolyse in Nicotinamid und ADP-Ribose, und zwar schneller bei Wärme und in alkalischer Lösung, und es ist lichtempfindlich. Ob und welcher dieser Vorgänge einen Gelbstich erzeugt, ist in den für diese Seite ausgewerteten Quellen nicht auffindbar.

Warum sieht NAD+ in einem Behälter gelb und im anderen blasser aus?

Wie viel Licht eine Lösung aufnimmt, steigt mit ihrer Konzentration und mit der Strecke, die das Licht durch sie zurücklegt. Diesen Zusammenhang beschreibt das Lambert-Beer-Gesetz. Im schmalen Zylinder einer Spritze ist die Strecke kurz, im breiten Vial länger, deshalb kann dieselbe Flüssigkeit im Vial dunkler wirken. Die Farbprüfungen der Arzneibücher legen Röhrchengröße und Blickrichtung fest.

Muss NAD+ gekühlt werden?

Die Datenblätter der Reagenzienhersteller nennen für das trockene Pulver -20 °C oder 2 bis 8 °C, und zwar trocken gelagert, weil es Feuchtigkeit anzieht. Für Lösungen berichten sie Folgendes: Bei einer wässrigen Lösung waren nach 4 Wochen bei 2 bis 8 °C noch mindestens 99 Prozent vorhanden, neutrale oder leicht saure Lösungen blieben bei 0 °C mindestens 2 Wochen stabil, und beim Erhitzen zerfällt NAD+ rasch.

Zeigt ein Gelbstich, wie viel NAD+ noch übrig ist?

Nein. Die Farbe ist kein Maß für den Gehalt. In einer Studie über 43 Tage verlor eine NAD+-Lösung in einem bestimmten Puffer fast ihr gesamtes NAD+. Gemessen wurde der Verlust über die Aufnahme von ultraviolettem Licht, nicht mit dem Auge, und die sichtbare Farbe beschreibt die Studie nicht. Gehalt und Reinheit lassen sich nur im Labor bestimmen, etwa per HPLC oder enzymatischem Test, nicht durch einen Blick auf das Vial.

Ist NAD+ als Arzneimittel zugelassen?

Nur in China. Dort ist eine NAD+-Injektion zur unterstützenden Behandlung bei zu wenigen weißen Blutkörperchen, koronarer Herzkrankheit und Herzmuskelentzündung zugelassen. In den USA, der Europäischen Union, Großbritannien, Kanada, Australien und der Schweiz fand sich keine Zulassung. Reagenzienhersteller verkaufen NAD+ für den Laborgebrauch, und ein Datenblatt hält ausdrücklich fest, dass es nicht zur Verwendung als Arzneimittel bestimmt ist.

Quellen

  1. Sigma-Aldrich (2006). β-Nicotinamide adenine dinucleotide, Product Number N8285, Product Information. Sigma-Aldrich. https://www.sigmaaldrich.com/deepweb/assets/sigmaaldrich/product/documents/668/557/n8285pis.pdf
  2. Merck / Calbiochem (2026). NAD+, Free Acid, product 481911: properties and preparation note. Merck KGaA. https://www.sigmaaldrich.com/US/en/product/mm/481911
  3. Roche (2026). NAD Grade I, free acid: specification and storage of working solution. Roche Diagnostics via Sigma-Aldrich. https://www.sigmaaldrich.com/US/en/product/roche/nad100ro
  4. Roche CustomBiotech (2026). NADH, Grade II, disodium salt: appearance, solution and stability. Roche Diagnostics. https://custombiotech.roche.com/global/en/products/cb/nadh-grade-ii-322141.html
  5. Roche (2026). NADH Grade II, disodium salt: absorbance coefficients and storage. Roche Diagnostics via Sigma-Aldrich. https://www.sigmaaldrich.com/US/en/product/roche/10128023001
  6. Thermo Fisher Scientific (2026). beta-Nicotinamide adenine dinucleotide hydrate, 98+%, catalogue 124532500, Product Specification. Thermo Fisher Scientific. https://assets.thermofisher.com/chem-specs-pdf/retrievePdf?countryCode=cn&erp_type=CN_E1_LCD&rootSku=12453&sku=124532500
  7. Cayman Chemical (2022). NAD+ (free acid), Item No. 16077, Product Information. Cayman Chemical. https://cdn.caymanchem.com/cdn/insert/16077.pdf
  8. New England Biolabs (2026). β-Nicotinamide adenine dinucleotide (NAD+), B9007, product notes. New England Biolabs. https://www.neb.com/en-us/products/b9007-beta-nicotinamide-adenine-dinucleotide-nad
  9. Wolfe KD, Alahuhta M, Himmel ME, Bomble YJ, Jennings GK, Cliffel DE (2024). Long-Term Stability of Nicotinamide Cofactors in Common Aqueous Buffers: Implications for Cell-Free Biocatalysis. Molecules 29(22):5453. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC11597533/
  10. Hachisuka S-I, Sato T, Atomi H (2017). Metabolism Dealing with Thermal Degradation of NAD+ in the Hyperthermophilic Archaeon Thermococcus kodakarensis. Journal of Bacteriology 199(19):e00162-17. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC5585711/
  11. Bull HG, Ferraz JP, Cordes EH, Ribbi A, Apitz-Castro R (1978). Concerning the mechanism of the enzymatic and nonenzymatic hydrolysis of nicotinamide nucleotide coenzymes. Journal of Biological Chemistry 253(14):5186-5192. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/209029/
  12. Iverson D, DeChatelet LR, Spitznagel JK, Wang P (1977). Comparison of NADH and NADPH oxidase activities in granules isolated from human polymorphonuclear leukocytes with a fluorometric assay. Journal of Clinical Investigation 59(2):282-290. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC333358/
  13. Jacobson EL, Cervantes-Laurean D, Jacobson MK (1997). ADP-ribose in glycation and glycoxidation reactions. Advances in Experimental Medicine and Biology 419:371-379. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9193679/
  14. Cervantes-Laurean D, Minter DE, Jacobson EL, Jacobson MK (1993). Protein glycation by ADP-ribose: studies of model conjugates. Biochemistry 32(6):1528-1534. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8431431/
  15. IUPAC (2025). Beer–Lambert law. Compendium of Chemical Terminology (Gold Book), version 5.0.0. https://doi.org/10.1351/goldbook.B00626
  16. World Health Organization (2017). The International Pharmacopoeia, 1.11 Colour of liquid, including 1.11.2 Degree of coloration of liquids reproduced from the European Pharmacopoeia (method 2.2.2). WHO. https://digicollections.net/phint/pdf/b/7.1.11.1.11-Colour-of-liquid.pdf
  17. Liu F, Hutchinson R (2024). Visible particles in parenteral drug products: A review of current safety assessment practice. Current Research in Toxicology 7:100175. https://doi.org/10.1016/j.crtox.2024.100175
  18. PubChem (2026). Compound summaries CID 5892 (nadide, NAD+) and CID 439153 (NADH). National Center for Biotechnology Information. https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/compound/5892
  19. Zhang Q, Ames JM, Smith RD, Baynes JW, Metz TO (2009). A perspective on the Maillard reaction and the analysis of protein glycation by mass spectrometry: probing the pathogenesis of chronic disease. Journal of Proteome Research 8(2):754-769. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19093874/
  20. Sigma-Aldrich (2026). β-Nicotinamide adenine dinucleotide sodium salt, Product Number N0632, product specification: solubility in water 50 mg/ml, clear, colorless to faintly yellow. Sigma-Aldrich. https://www.sigmaaldrich.com/US/en/product/sigma/n0632
  21. DXY drug database (2026). Label of Coenzyme I for Injection (注射用辅酶Ⅰ), Kaifeng Knature Pharmaceutical, approval numbers H41024721 and H41025094, label approved 8 December 2010. https://drugs.dxy.cn/drug/C0e3Iui9RyaWHKhCVVQQCw==

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Zuletzt geprüft: Oktober 2026

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